Диагностические задачи



Составить схему лабораторной диагностики на хламидиоз.

Составить сопроводительную документацию к материалу для исключения хламидиоза.

Составить развернутый протокол испытаний на хламидиоз

ПК-29 ПК-4 ПК-8

-оценка «зачтено» выставляется студенту, если раскрыто содержание вопроса - охарактеризована группа грамотрицательных бактерий - облигатных внутриклеточных паразитов, порядок Rickettsiales u Chlamydiales, семейство Rickettsiaceae; дана экология риккетсий; отмечена роль насекомых-переносчиков в распространении и циркуляции риккетсий в природе; дана характеристика основных видов триба Rickettsiae, Erlichiae, возбудителяКу-лихорадки, кератаконъюктивита и коудроза крупного рогатого скота, эрлихиоза собак, орнитоза, хламидиоза животных.. Разобрана принципиальная схема микробиологического исследования.

Необходимо в реферате показать способность и готовность осуществлять сбор научной информации, составление рефератов, библиографий

- знание особенности профилактики,диагностики при инфекциях вызванных риккетсиями и хламидиям.

- умение осуществлять и применять необходимые диагностические мероприятия и методы асептики и антисептики при работес риккетсиями и хламидиям ( ПК -8)

- оценка «не зачтено» выставляется студенту, если не выполнены критерии оценки изложенные выше.

Тестирование используется только для промежуточного контроля знаний по дисциплине.

Тестовые вопросы по теме, используемые для промежуточного контроля знаний по дисциплине, представлены в соответствующем разделе фонда оценочных средств.

 

Тема 29. Микроскопические грибы – возбудители микозов и микотоксикозов. Возбудителм эпизоотического лимфангита, кандидамикоза, трихофитии, микроспории, стахиботриотоксикоза, фузариотоксикоза, аспергиллотоксикоза

Контролируемые компетенции (или их части):

знанием методов асептики и антисептики и их применение (ПК -8)

Кейс-задача

Задание (я):

программа проведения Кейс-задач

«ВОЗБУДИТЕЛИ МИКОЗОВ И МИКОТОКСИКОЗОВ»

 

Дата проведение ___________декабря, время ________ аудит. ________

  1. Презентация по теме
  2. Кроссворд по теме (не менее30 терминов) составляет одна команда, решает другая
  3. Блиц опрос по теме. Задает вопросы одна команда. Дает ответы другие. Вопросы могут быть в виде шарад, ребусов и др.
  4. Решение диагностической задачи каждой команде по одной задаче.(задачу выдает преподаватель).

ТЕМЫ ДЛЯ КОМАНД (подготовка презентаций, кроссвордов и вопросов)

  1. Возбудители поверхностных микозов кожи и ее производных – дерматомикозов (возбудители трихофитии, микроспория и парши) __________ группа
  2. Возбудители глубоких микозов кожи, характеризующие появлением узлов и образованием язв (возбудители эпизоотического лимфангита, споротрихоз, североамериканский бластомикоз) __________ группа
  3. Возбудители висцеральных микозов с локализацией патологического процесса в органах дыхания или др. органах (возбудители кандидомикоза, аспергиллеза, мукормикоза, криптококкоза, кокцидиоидомикоза) __________ группа
  4. Возбудители микотоксикозов (стахиботриотоксикоза, фузариотоксикоза, аспергиллотоксикоза, афлотоксикоза) __________ группа

Диагностические задачи по теме «Возбудители микозов и микотоксикозов»

1. На ферме у нетеля, находившейся на карантине (завоз из Голландии), обнаружено при осмотре на коже головы вокруг глаз округлый очаг с мягкими корочками, размером 3 см в диаметре. Корки легко отделяются вместе со склеенными волосами, под ними на влажной поверхности кожи торчат обломавшиеся волосы, обнаружены пузырьки и папулы.

ЗАДАНИЕ-

1.Какой предположительный диагноз?

2.Какой материал и как взять на исследование?

3. Какой метод лабораторной диагностики является наиболее простым и быстрым для установления микотической природы заболевания?

4. Как приготовить препарат для микроскопического исследования нативного материала?

5. Какой метод лабораторной диагностики позволяет установить вид возбудителя микоза?

Ответы –

1. Предположительный диагноз - трихофития

2. Для исследования необходимо взять соскобы с пораженных частей тела животного вместе с корочками и чешуйками, пораженные волосы с участков, граничащих со здоровой кожей.

3. Микроскопическое исследование патологического материала с целью обнаружения тканевой формы гриба (споры и нити мицелия).

4. Для приготовления препарата используют корневую часть волоса. Исследуемый материал помещают в чашку Петри, измельчают ножницами и расщепляют с помощью скальпеля. Измельченный материал переносят на предметное стекло, наносят каплю 20% (10%) едкого натрия (калия), слегка подогревают над пламенем горелки до появления белого ореола вокруг капли, после этого добовляют каплю 50%-ного водного раствора глицерина, накрывают покровным стеклом и микроскопируют. Препарат сначала изучают под малым увеличением микроскопа (для поиска пораженных волос), затем под большим увеличением микроскопа. При микроскопическом исследовании пораженных волос удается определить род гриба, вызвавшего заболевание. Для этого определяют размеры, тип расположения артроспор в волосе.

Для грибов рода Тrichophyton характерно расположение cнаружи или внутри параженного волоска в виде рядов септированного мицелия. Споры округлые или овальные, располагаются цепочками, как и мицелий вокруг или внутри волоса.

5.Вид возбудителя можно установить при культуральном исследовании.

2. В лабораторию поступили трупы птиц – куры (2 шт.), истощены, издают резкий мышиный запах. На гребне и сережках обнаружены серовато-белые узелки (скутулы). На отдельных участках кожи обнаружены струпья и очаги облысения. На слизистой оболочке верхних дыхательных путей, в зобе, тонком отделе кишечника и легких выявили узелки, язвы и кольцевидные наложения. При микроскопировании плотного белого налета с пораженного участка и с основании перьев обнаружили – скопление мицелияи круглые многогранные споры гриба. На агаре Сабура – округлые гладкие колонии, при «старении» колонии становятся складчатые и приобретают розовый оттенок.

ЗАДАНИЕ-

1.Какой предположительный диагноз?

2.Какой материал и как взять на исследование?

3. Какой метод лабораторной диагностики является наиболее простым

и быстрым для установления микотической природы заболевания?

4. Как приготовить препарат для микроскопического исследования нативного материала?

5. Какой метод лабораторной диагностики позволяет установить вид возбудителя микоза?

Ответы –

1. Предположительный диагноз - парша

2. Для исследования необходимо взять соскобы с пораженных частей трупа птиц и основание перьев.

3. Микроскопическое исследование патологического материала с целью обнаружения тканевой формы гриба (споры и нити мицелия).

4. Для приготовления препарата используют корневую часть волоса. Исследуемый материал помещают в чашку Петри, измельчают ножницами и расщепляют с помощью скальпеля. Измельченный материал переносят на предметное стекло, наносят каплю 20% (10%) едкого натрия (калия), слегка подогревают над пламенем горелки до появления белого ореола вокруг капли, после этого добовляют каплю 50%-ного водного раствора глицерина, накрывают покровным стеклом и микроскопируют. Препарат сначала изучают под малым увеличением микроскопа (для поиска пораженных волос), затем под большим увеличением микроскопа. При микроскопическом исследовании пораженных волос удается определить род гриба, вызвавшего заболевание. Для этого определяют размеры, тип расположения артроспор в волосе.

Для грибов рода Achorion (Тrichophyton gallinae) характерно тонкий мицелий, состоящий из прямоугольных клеток с двухконтурной оболочкой. Споры гриба многогранной формы, располагаются цепочками или группами.

5.Вид возбудителя можно установить при культуральном исследовании.

3. В лабораторию поступили трупы птиц – индюшата 2,5 мес. возраста (2 шт.), истощены. При осмотре обнаружено поражение зоба, дыхательных путей и желудочно-кишечного тракта. При вскрытии птиц выявлено в паренхиматозных органах множественные узелки- гранулемы. При микроскопии обнаружены дрожжеподобные клетки, мицелий отсутствует.

ЗАДАНИЕ-

1.Какой предположительный диагноз?

2.Какой материал и как взять на исследование?

3. Какой метод лабораторной диагностики является наиболее простым и быстрым для установления микотической природы заболевания?

4. Какой метод лабораторной диагностики позволяет установить вид возбудителя микоза?

Ответы –

1. Предположительный диагноз - кандидоз

2. Для исследования необходимо взять пленки, наложения, соскобы со слизистой зоба и желудочно-кишечного тракта, содержимое узелков – гранулем с паренхиматозных органов, особенно с центральной части гранулемы.

3. Микроскопическое исследование патологического материала с целью обнаружения дрожжевых клеток и гифов.

4.Вид возбудителя можно установить по культуральным (в два этапа – на агаре Сабура, затем на бульонах Сабура, картофельном и кукурузном отваре или агаре) и по ферментативным свойствам.

4. В лабораторию поступил труп собаки, из анамнеза при жизни– прогрессирующее истощение, рвота после приема пищи, затем отказ от корма, но усиленная жажда, понос, паралич задних конечностей. При вскрытии – гранулемы в бронхиальных и медиастинальных лимфатических узлах. Легочная ткань плотная, многочисленные гранулемы рассеяны по всей паренхиме. Гранулематозные поражения с клеточной инфильтрацией в печени, селезенке и почках. При гистологическом исследовании узелков – эпилиоидные и гигантские клетки, макрофаги, мононуклеары, сферулы и споры. При микроскопировании в «раздавленной капле» - обнаружение сферул.

ЗАДАНИЕ-

1.Какой предположительный диагноз?

2.Какой материал и как взять на исследование? Особенность, которую необходимо строго соблюдать при отборе и проведение исследований.

3. Какой метод лабораторной диагностики является наиболее простым и быстрым для установления микотической природы заболевания?

4. Какие дополнительные методы позволяет установить вид возбудителя микоза, отдифиренцировать от туберкулеза и актиномикоза?

Ответы –

1. Предположительный диагноз - кокцидиоидомикоз

2. Объектом исследования служат гной, кровь, содержимое очагов поражения и кусочки пораженных органов. При отборе и работе с таким материалом соблюдают предельную осторожность, кокцидиоидомикоз считается к группе особо опасных микозов, болеют и люди.

3. Микроскопическое исследование патологического материала с целью обнаружения сферул – образования правильной круглой форм.

4.Кроме микроскопии серологическую диагностику (РА, РСК с кокцидиоидином и РП с полисахаридным антигеном). Для раннего выявления зараженных животных проводят аллергическую диагностику с кокцидиоидином. Проводят биопробу (мыши, морские свинки, кролики, собаки и куриные эмбрионы).

5. В лабораторию поступила проба измельченной кукурузы из свиноводческого хозяйства. Из опроса сопровождающего пробы – в хозяйстве наблюдается массовый падеж поросят отъемного периода, с симтомокомплексом общего отравления, со значительным изменением печени. С помощью метода высокоэффективной жидкостной хроматографии определен в пробе афлатоксин В-1 в количестве 0,75 мг/кг.

ЗАДАНИЕ-

1. Какие грибы являются продуцентами афлатоксина?

2. Что нужно доставить в лабораторию для подтверждения, что падеж поросят вызвал именно кукурузный зернофураж?

3. Какие методы микологического исследования, можно применить дополнительно и при каких условиях их проводят?

4. Какие методы токсико-биологического исследования можно применить при диагностике афлатоксикоза?

Ответы –

Афлатоксины - являются дериватами дифуранокумарина, образуемые штаммами Aspergillus parasiticus и Aspergillus flavus.

От павших поросят – печень, почки, мышечную ткань (на обнаружение афлатоксина)

Если в пробах не выделен афлатоксин, диагноз ставят по результатам выделения гриба-продуцента из фекалий, содержимого ЖКТ, остатков корма или пыли, взятых из бункера, где хранится корм. Если корм подвергался термической обработке можно обнаружить только токсин, гриба не выделить. Микологическое исследование включает обнаружение гриба в исходном материале методом световой микроскопии, выделение чистой культуры посевом на агар Чапека, Сабура и идентификация возбудителя по культурально-морфологическим свойствам. При микроскопировании – септированный мицелий и несептированные кондидиеносцы. На вздутиях расположены непосредственно «леечка» - фиалиды носители цепочек конидий.На агаре Чапека формируют колонии с обильным спороношением, цвет зависит от массы конидий.

Проводят на биологических моделях – кроликах (кожная проба), аквариумных рыбках гуппи породы Винер, белых мышах или с.-х. животных.

Комментарии - При определении токсичности фуражного зерна, продуктов его переработки (комбикормов) и других видов концентрированных (за исключением жмыхов, шротов и кормовых дрожжей), а также грубых кормов - методом пробы на коже кролика. Метод основан на дермонекротическом действии токсических веществ микогенного происхождения, извлекаемых из корма диэтиловым эфиром или ацетоном. Результаты исследования оценивают следующим образом. Корм нетоксичный — отсутствие воспалительной реакции или наличие гиперемии, сохраняющейся не более 2 сут после нанесения экстракта и не сопровождающейся шелушением кожи. Корм слаботоксичный — гиперемия, сохраняющаяся в течение 2—3 сут и заканчивающаяся шелушением кожи, или гиперемия, болезненность и отечность, проявляющиеся незначительным утолщением кожи с последующим образованием отдельных корочек. Корм токсичный — резкая гиперемия, болезненность, складчатость, отек, характеризующийся сильным утолщением кожи, на всей поверхности участка появляются язвы, затем сплошной струп.

В качестве дополнительного можно использовать метод определения токсичности кормов на рыбах гуппи, позволяющий обнаружить микотоксины трихотеценовой группы, стригматоцистин, патулин. Токсичность жмыхов, шротов и кормовых дрожжей определяют на белых мышах.

6. В лабораторию поступили трупы цыплят - бройлеров трехнедельного возраста, пробы комбикорма. Из анамнеза следует - в хозяйство поступила новая партия комбикорма для цыплят. У цыплят после вскармливания наблюдался беспокойство, нахохливание и диарея, атоксия, мышечные судороги, тремор ног и мышц шеи, через сутки массовая гибель цыплят. При вскрытии – кровоизлияния в слизистой оболочке и сгустки крови во внутренних органах с белыми хлопьеподобными отложениями на почках, мочеиспускательном канале, на сердце, перикарде, печени и селезенке, энтериты. С помощью метода высокоэффективной жидкостной хроматографии определен в пробе корма охратоксин А в количестве 16 мг/кг.

ЗАДАНИЕ-

1. Какие грибы являются продуцентами охратоксина?

2. Когда считается диагноз – охратоксикоз установлен?

3. Какие методы микологического исследования, можно применить дополнительно и при каких условиях их проводят?

4. Характеристика и патогенетическое действие охратоксина?

Ответы –

Наиболее типичным продуцентом охратоксинов, откуда происходит и их название, является гриб Aspergillus ochraceus. Однако их могут также продуцировать грибы Penicillium viridicatum, P. variable, P. cyclopium, P. commune, P. purpurescens, A. sulphureus, A. alliaceus, A, sclerotiorum и др. Все эти грибы развиваются и продуцируют микотоксины в период хранения кормов. Взависимости от климатической зоны – с теплым климатом охратоксин преимущественно продуцируют грибы из рода Aspergillus, в северных странах – Penicillium.

Диагноз считается установленным по итогам изучения кормов и патологического материала на охратокины

Главное внимание при постановке диагноза уделяют выявлению наличия грибов-продуцентов охратоксина A в кормах, токсических доз самого охратоксина A в корме, а также в патматериале (почках, печени и др.). Эти исследования проводят по методикам, утвержденным Главным управлением ветеринарии МСХ СССР ("Методика определения охратоксина A в зернофураже, продуктах его переработки и комбикормах", 11 апреля 1984 г.; "Методика определения охратоксина в органах и тканях животных", 10 апреля 1984 г.).
При необходимости с целью подтверждения диагноза ставится биопроба для воспроизводства заболевания, аналогичного по клиническим и патологоморфологическим признакам наблюдавшемуся в хозяйстве. Биопробу ставят со стандартом микотоксина (охратоксина A) на тех возрастных группах животных, которые болели в хозяйстве.
Дифференциальный диагноз
При постановке диагноза на охратоксикоз следует исключить чуму свиней, дизентерию, вирусный гастроэнтерит, сальмонеллез, отравление поваренной солью.

3. Микологическое исследование включает обнаружение гриба в исходном материале методом световой микроскопии, выделение чистой культуры посевом на агар Чапека, Сабура и идентификация возбудителя по культурально-морфологическим свойствам. При микроскопировании Aspergillus ochraceus – септированный мицелий и несептированные кондидиеносцы. На вздутиях расположены непосредственно «леечка» - фиалиды носители цепочек конидий. На агаре Чапека формируют колонии с обильным спороношением, цвет зависит от массы конидий. Р. Penicillium - септированные мицелий и кондидиеносцы, ветвящиеся на вершине один или нескодько раз в виде кисточек. На агаре Чапека – плоские бархатистые колонии (цвет от светло-голубого до темно-зеленого, среда окрашена в черный цвет)

4. Охратоксины В чистом виде нестабильны, наиболее проявляемые тератогенные, нефротоксические и иммунодепресивные свойства. Охратоксин А относится к высокотоксичным соединениям — ЛД50 для лабораторных животных при однократном введении внутрь 20—28 мг/кг массы животного, для цыплят 7-дневного возраста 11 —15мт/кг. Микотоксин обладает выраженной кумуляцией. Наиболее чувствительны к нему свиньи, особенно молодые, затем птицы.

7. В лабораторию поступил патматериал от трупов телят шестимесячного возраста. Из анамнеза следует- телят пасли поздней осенью по зерновым культурам, когда из-за неблагоприятных метеоусловий они остались неубранными. Клинические признаки - угнетенное состояние, снижением чувствительности, нарушением координации движений, сопровождается мышечной дрожью, нарушением дыхания, деятельности сердечно-сосудистой системы, расстройством пищеварения, снижением аппетита (вплоть до полного отказа от корма), атония преджелудков, парез или паралич тазовых конечностей. Температура без изменений. Длительность переболевания - 1-4 дня, затем наступает гибель животных. При вскрытии трупов отмечают: язвенно-некротический стоматит, катарально-геморрагический гастроэнтерит, геморрагический диатез, жировую или зернистую дистрофию печени, почек и миокарда, серозный отек губ, некроз и десквамация эпидермиса кожи крыльев носа.

Врачи лаборатории выехали на пастбище, отобрали «пораженное» зерно. Оно оказалось – легковесное, с матово-серой оболочкой, пятна красного, розовато-оранжевого цвета.

ЗАДАНИЕ-

1.Какой предположительный диагноз?

2.Какой материал и как взять на исследование?

3. Какой метод лабораторной диагностики является наиболее простым и быстрым для установления микотической природы заболевания?

4. Особенности постановки дермонекротической пробы?

Ответы –

1. Предположительный диагноз – фузариотоксикоз.

2. Предпочтительнее взять корма на исследования, но посылают и пораженные органы и ткани животных.

3. Микологическое исследование включает обнаружение гриба в исходном материале (корм) методом световой микроскопии, выделение чистой культуры посевом на агар Чапека, Сабура и идентификация возбудителя по культурально-морфологическим свойствам. Микроскопия р. Fusarium- септированный ицелий, макроконидиииз нескольких крупных удлиненных клеток веретенообразной или серповидной формы. На агаре – хлопьевидные пушистые белые, бело-красные или кровавые колонии.

4. Обладают резко выраженным дермонекротическим действием - Т-2 токсин, диацетоксицирпенол и др. споротрихиеллотоксикозы. Не обладают этим действием зеаралинен (Ф-2).

8. На станцию по борьбе с болезнями животных обратился фермер за консультацией. По его словам – овцы отказываются от корма, происходят частые аборты, расстройства желудочно-кишечного тракта. При выезде врача в хозяйство обнаружено – у некоторых животных поражение кожи, общий токсикоз, слабое прикрепление волос, конъюнктивиты, гиперемия слизистой оболочки ротовой полости и носа, саливация, серозно-геморрагическое выделение из носа, некротические очаги на слизистой оболочке ротовой полости. При осмотре подстилки (солома) и корма (сена)обратили внимание на наличие темного и черного налета.

ЗАДАНИЕ-

1.Какой предположительный диагноз?

2.В чем заключается лабораторная диагностика?

3. Какой метод лабораторной диагностики является наиболее простым и быстрым для установления микотической природы заболевания?

4. Особенности постановки токсико-биологческой пробы?

Ответы –

Предположительный диагноз – стахиботриотоксикоз

Основана лабораторная диагностика на органолептическом, токсико-биологическом и микологическом исследовании корма, подстилки.

Микологическое исследование включает обнаружение гриба в исходном материале (корм) методом световой микроскопии, выделение чистой культуры посевом на агар Чапека, Сабура и идентификация возбудителя по культурально-морфологическим свойствам. Черные соломинки с налетом микроскопируют Обращают внимание на наличие вегетативных и репродуктивных структур. Темноокрашенные кониденосцы и опавшие (отдельные) споры гриба. Колонии на агаре Чапека с двумя зонами роста. Центральная складчатая, черного цвета, по периферии - белая прозрачная каемка. Цвет питательной среды вокруг колонии бурый, нередко с темно-вишневым оттенком.

Токсико-биологические исследования проводят на куриных эмбрионах. В желточный мешок, гибель эмбрионов в течении 18 час.

Критерии оценки ОК-6, ПК-29 ПК-4 ПК-8 ПК-30

-оценка «зачтено» выставляется студенту, если при выполнении задания уяснили распространение в природе, значение в патологии с.-х. животных и человека, лабораторную диагностику плесневых микозов. Дали полную характеристику возбудителей микозов, вызываемых дрожжеподобными грибами - кандидомикоза, кокцидиомикоза, эпизоотического лимфангита, кругу восприимчивых животных. Обратили особое внимание на возбудителей дерматомикозов (трихофитии, микроспории, парши), дифференциации возбудителей трихофитии и микроспории, иммунитет при дерматомикозах. Уяснили принципиальную схему микологического исследования. Охарактеризовали микотоксины (афла- и охратоксины, пеницилловая кислота, трихотецены, рубратоксины, зеараленон) и грибы-продуценты,. распространение их в природе, восприимчивость животных. Уяснли особенности отбора материала для исследования, схему лабораторной диагностики, значение токсикобиологического, микологического и физико-химического анализа.

Необходимо в решении (выполнении задания) показать:

1) –знание иностранного и латинского языков для получения информации профессионального характера из иностранных и отечественных источников

2) - знание особенности профилактики,диагностики при микозах и микотоксикозах)

3) - умение осуществлять и применять необходимые диагностические мероприятия и методы асептики и антисептики при работес патогенными грибами ( ПК -8)

4) - способность и готовность осуществлять сбор научной информации, библиографий,

5) умение участвавать в научных дискуссиях и процедурах защиты научных работ, выступать с докладами и сообщениями по тематике проводимых исследований, анализировать отечественный и зарубежный опыт по тематике исследования,

6) - способность и готовность к участию в освоении современных теоретических и экспериментальных методов исследованияумеет применять инновационные методы научных исследований при изучении патогенных грибов

- оценка «не зачтено» выставляется студенту, если не выполнены критерии оценки изложенные выше.

Тестирование используется только для промежуточного контроля знаний по дисциплине.

Тестовые вопросы по теме, используемые для промежуточного контроля знаний по дисциплине, представлены в соответствующем разделе фонда оценочных средств.

 

Тема 30. Микробиологическое исследование воды, воздуха, почвы, навоза

Контролируемые компетенции (или их части):

умением правильно пользоваться медико-технической и ветеринарной аппаратурой, инструментарием и оборудованием в лабораторных целях (ПК -3)

способностью и готовностью использовать нормативную документацию, принятую в ветеринарии, терминологию, действующие международные классификации;(ПК -16)

Вопросы для опроса


Дата добавления: 2016-01-05; просмотров: 67; Мы поможем в написании вашей работы!

Поделиться с друзьями:






Мы поможем в написании ваших работ!