Продуктивность свиноматок в зависимости от различных способов стимуляции воспроизводительных функций
При выгульном их содержании
| Группы животных |
Условия проведения опыта | Число маток в опыте | Пришло маток в охоту за 21 день | Опоросы | Получено поросят | |||
| Число | % | Число | % | на 1 опорос | на 100 маток | |||
| Первый опыт | ||||||||
| 1 | Выгульное содержание, без стимуляции | 30 | 29 | 96,6± 3,2 | 26 | 89,6± 5,6 | 9,80± 0,16 | 850 |
| 2 | Выгульное содержание, стиму- ляция хряком-пробником за 3 дня до отъема поросят | 30 | 30 | 100,0± 0,0 | 27 | 90,0± 5,4 | 10,18± 0,20 | 916 |
| 3 | Выгульное содержание, стиму- ляция хряком-пробником после отъема поросят | 30 | 30 | 100,0± 0,0 | 27 | 90,0± 5,4 | 10,37± 0,25 | 933 |
| 4 | Выгульное содержание, стиму- ляция хряком-пробником во время осеменения | 30 | 29 | 96,6± 3,2 | 26 | 89,6± 5,6 | 10,65± 0,32 | 923 |
| Второй опыт | ||||||||
| 1 | Выгульное содержание, без стимуляции | 30 | 28 | 93,3± 4,5 | 24 | 85,7± 6,6 | 10,20± 0,13 | 816 |
| 2 | Выгульное содержание, стиму- ляция феромоном за 3 дня до отъема поросят | 30 | 29 | 96,6± 3,2 | 25 | 86,2± 6,4 | 10,32± 0,21 | 860 |
| 3 | Выгульное содержание, стиму- ляция феромоном после отъема поросят | 30 | 29 | 96,6± 3,2 | 25 | 86,2± 6,4 | 10,40± 0,28 | 866 |
| 4 | Выгульное содержание, стиму- ляция феромоном во время осеменения | 30 | 28 | 93,3± 4,5 | 25 | 89,2± 5,8 | 10,92± 0,28 | 910 |
| Третий опыт | ||||||||
| 1 | Выгульное содержание, без стимуляции | 30 | 28 | 93,3± 4,5 | 23 | 82,1± 7,2 | 10,08± 0,37 | 773 |
| 2 | Выгульное содержание, одно- кратное введение эстуфалана за 3 дня до отъема поросят | 30 | 28 | 93,3± 4,5 | 24 | 85,7± 6,6 | 9,95± 0,16 | 796 |
| 3 | Выгульное содержание, одно- кратное введение | 30 | 29 | 96,6± 3,2 | 24 | 82,7± 7,0 | 9,87± 0,23 | 790 |
Однократное введение внутримышечно маткам эстуфалана за 3 дня до отъема поросят или после отъема поросят, во время осеменения при выгульном содержании достоверно не повыша- ет половую охоту, оплодотворяемость и многоплодие. Однако при стимуляции эстуфаланом число поросят, полученных на 100 маток, увеличивается на 2,1–2,9 % по сравнению с кон- трольной группой.
|
|
|
В следующем опыте изучали эффективность применения различных способов стимуляции половой охоты при нарушении воспроизводительной функции у свиноматок при безвыгульном содержании. Для опыта сформировали 9 групп свиноматок- аналогов по 50 голов в каждой, которые после отъема поросят в 28-дневном возрасте в течение 21 суток не приходили в охоту.
Результаты этого опыта представлены в табл. 177, из кото- рой следует, что все испытанные нами способы стимуляции по- ловой охоты у свиноматок при нарушении воспроизводитель- ной функции оказались эффективными: за время наблюдения в опытных группах по сравнению с контролем пришла в охоту большая часть свиноматок. Минимальный результат был полу- чен при использовании тривитамина. Число маток, пришедших в охоту, здесь было выше контроля всего на 4 %. В группе, где применяли эстрофан, превышение над контролем составило 8 %. Эстуфалан увеличил число пришедших в охоту маток на 10 %, дигитол – на 16 %, моцион – на 20 %, общение с хряком – на 24 % и инъекция СЖК – на 32 %. Однако разница здесь ста- тистически достоверна лишь при сравнении с третьей, восьмой и девятой группами. По результативности осеменения свинома- ток в зависимости от различных способов стимуляции досто- верных различий между группами мы не установили, хотя в группе свиноматок, где применяли СЖК, разница с контролем составила 16,9 %.
|
|
|
Таблица 177
Эффективность применения различных способов стимуляции половой охоты при на- рушении
Воспроизводительной функции самок
| Группы живот- ных | Условия проведения опыта | Число | Пришло маток в охоту за 21 сутки | Опоросы | Получено поросят | |||
| Число | % | Число | % | на 1 опорос | на 100 ма- ток, имев- шихся на начало опыта | |||
| 1 | Безвыгульное содержание маток и без стимуляции | 50 | 20 | 56,0±7,0 | 20 | 71,4±8,5 | 9,1±0,2 | 364 |
| 2 | Однократное введение тривитамина (АДЕ) в дозе 3 мл | 50 | 30 | 60,0±6,9 | 22 | 73,3±8,0 | 9,8±0,2 | 432 |
| 3 | Однократное введение СЖК в дозе 3000 ME | 50 | 44 | 88,04±4,5 | 24 | 54,5±7,5 | 10,4±0,1 | 500 |
| 4 | Однократное введение эстрофана в дозе 1 мл | 50 | 33 | 64,0±6,7 | 24 | 75,0±7,6 | 9,6±0,2 | 464 |
| 5 | Однократное введение эстуфалана в дозе 1 мл | 50 | 33 | 66,0±6,6 | 24 | 72,7±7,7 | 10,0±0,01 | 484 |
| 6 | Однократное введение дигитола в дозе 1 мл | 50 | 34 | 68,0+6,5 | 24 | 70,5±7,8 | 9,1 ±0,1 | 440 |
| 7 | Ежедневное распыление из пульвери- затора феромона хряка 1 раз в сутки | 50 | 36 | 72,0±6,3 | 26 | 72,2±7,4 | 10,6±0,2 | 556 |
| 8 | Стимуляция хряком-пробником в те- чение 1 часа ежедневно | 50 | 40 | 80,0±5,6 | 30 | 75,0±6,8 | 10,3±0,2 | 620 |
| 9 | Ежедневный моцион свиноматок в те- чение 1 часа до появления охоты | 50 | 38 | 76,0±6,0 | 28 | 73,6±7,1 | 9,7±0,1 | 544 |
|
|
|
Самое высокое многоплодие свиноматок было после при- менения феромона – на 17,4 % больше контроля. Применение СЖК увеличивает многоплодие свиноматок на 14,3 %, общение с хряком-пробником – на 13,5 %, эстуфалана – на 10,7 %, триви- тамина – на 7,8 %, моциона – на 6,7 % по сравнению с кон- трольной группой. В остальных подопытных группах, хотя этот показатель превышал контроль, разница статистически недос- товерна.
Расчет полученных поросят на 100 предполагаемых свино- маток, взятых в опыт, показал, что наиболее эффективным спо- собом стимуляции половой охоты при нарушении воспроизво- дительной функции у свиноматок является ежедневное общение в течение 1 ч с хряком-пробником. В этом случае на 100 маток было получено 620 поросят, что на 70,3 % больше, чем в кон- трольной группе. Применение феромона, моциона, СЖК, эсту- фалана, дигитола и тривитамина позволяет повысить число по- лученных поросят на 100 маток по сравнению с контрольной группой на 52,7 %, 49,4 %, 37,3 %, 32,9 %, 27,4 %, 20,8 % и на
|
|
|
18,6 % соответственно.
Таким образом, на основании проведенных исследований мы выяснили, что наиболее эффективными способами стимуля- ции воспроизводительной функции у свиноматок являются:
1) организация моциона свиноматкам;
2) ежедневное общение маток после отъема поросят с хря- ком-пробником;
3) однократное внутримышечное введение свиноматке по- сле отъема поросят эстуфалана;
4) распыление из пульверизатора один раз в сутки полово- го феромона хряка в помещении, где содержатся матки после отъема поросят.
При выгульном содержании:
1) ежедневное общение свиноматок с хряком-пробником;
2) распыление полового феромона хряка во время осеме- нения свиноматок;
3) однократное внутримышечное введение свиноматкам эстуфалана за 3 дня до отъема поросят.
При нарушении воспроизводительной функции у свинома- ток наиболее эффективным способом стимуляции половой охо-
ты является ежедневное общение их в течение 1 ч с хряком- пробником.
Криоконсервация спермы хряков
Одним из важнейших путей интенсификации свиноводства является наиболее полная реализация генетического потенциала этого вида животных. Искусственное осеменение и возмож- ность длительного хранения спермы хряков позволяют значи- тельно ускорить в этом деле генетический прогресс.
Разработка метода замораживания и длительного хранения спермы хряка была предпринята многими учеными в различных странах. В настоящее время метод криоконсервации спермы хряков разработан и уже применяется в производстве как в на- шей стране, так и за рубежом. Однако существующие способы ее криоконсервации пока не обеспечивают максимального со- хранения биологической полноценности спермиев, что приво- дит к снижению и нестабильности результатов осеменения от- таянной после замораживания спермой. Кроме того, обработка больших объемов делает всю процедуру трудоемкой и дорого- стоящей.
В связи с этим ученые ведут поиск путей совершенствова- ния и разработки новых приемов криоконсервации спермы хря- ков, наиболее приемлемых для практического использования.
Замораживание спермы хряков. Методы глубокого замо- раживания спермы сельскохозяйственных животных разрабаты- вались учеными в течение ряда лет. Так, технологический метод замораживания спермы быков был разработан и внедрен в про- изводство в течение 15 лет. Однако усилия многих исследовате- лей как в нашей стране, так и за рубежом заморозить сперму хряков по аналогичному методу были безуспешными. Хотя по- сле замораживания, а затем оттаивания спермы сохранялась ее подвижность, но утрачивалась оплодотворяемость, эмпириче- ский подход к разработке метода замораживания спермы хряков был малоэффективным.
В 1962 г. В. Байером из 43 осемененных свиноматок оттаян- ной спермой опоросилось всего лишь 3 (7 %). Методика обра- ботки спермы заключалась в следующем. Центрифугированием свежевзятой спермы отделяли плазму и заменяли ее глюкозо-
желточно-глицериновой средой. После разбавления сперму расфасовывали в емкости по 50–100 мл с последующим охлаж- дением в течение 3–4 ч до 8–10°С. Затем ее замораживали при температуре 79°С. Перед осеменением сперму оттаивали в хо- лодной воде.
Аналогичный метод обработки спермы хряка применяли уже в 1966 г. И. Исао и др. Из свежевзятого эякулята центрифу- гированием отделяли спермии, разбавляли их средой до перво- начального объема и сохраняли при 10°С на протяжении 4 ч. За- тем к сперме в несколько этапов с интервалом 10 мин добавляли среду с содержанием 14 % глицерина. Положительные резуль- таты были получены в среде, состоящей из 46,73 г сахарозы, 11,8 г – гликокола, 1 г дигидростептомицина и 1 л дистиллиро- ванной воды.
Лучшие результаты при замораживании спермы были полу- чены при эквилибрации от 1 до 4 ч и оптимальной концентра- ции глицерина 6–8 %. Однако оценку при этом методе, видимо, проводили только по подвижности спермиев, поскольку авторы не сообщают о результативности осеменения. А этот критерий, как было выяснено позднее, недостаточно надежен.
Дальнейшие их опыты показали, что при разбавлении спер- мы средой с содержанием 7 % глицерина, расфасованной в ам- пулы по 1 мл с выдержкой при температуре 10°С в течение 3– 4 ч при быстром режиме замораживания, происходит снижение подвижности спермиев в интервале температур от минус 10°С до минус 40°С. При хранении спермы при минус 79°С восста- новление подвижности спермиев не отмечалось.
В 1970 г. впервые был получен высокий процент оплодо- творений свиноматок при хирургическом внутриутробном осе- менении оттаянной спермой. При этом наибольший процент оплодотворений был при введении спермы за 6 ч до овуляции (83,5 % оплодотворенных яйцеклеток). Но даже если сперма вводилась в яйцевод за 20 ч до овуляции, то и тогда было полу- чено 38 % оплодотворенных яйцеклеток. При осеменении хи- рургическим путем в верхушку рогов матки оплодотворяемость была крайне низкой (27 %). Эти исследования открывали пер- спективу широкого использования хряков, поскольку для хи- рургического внутриутробного осеменения требуется ничтожно малое количество спермы (в пределах десятой доли мл). В ре-
зультате чего одним эякулятом замороженной спермы хряка можно осеменить десятки тысяч свиней.
Убедительные данные о получении потомства от заморо- женной спермы хряка при нормальном осеменении через шейку матки относятся к 1971 г., когда почти одновременно в нашей стране и в США были получены поросята. Ф.А. Барановым бы- ла применена среда, содержащая комплекс динатриевой соли ЭДТА с кальцием и магнием, а замораживание спермы прово- дили с помощью автомата Линде. Для этого была использована густая фракция эякулята, которую после разбавления разливали в полиэтиленовые мешочки, охлаждали вначале до 0°С, а затем до минус 196°С. Оттаивание спермы проводили в химическом стакане, помещенном в водяную баню. Из 26 осемененных ма- ток опоросились 2 (8 %). При замораживании же спермы на су- хом льду 17 % маток дали нормальные опоросы (В.К. Милова- нов и др.).
Достижением в криобиологии спермы хряка было примене- ние анаэробиоза для повышения устойчивости спермы перед замораживанием. Было установлено, что если перед охлажде- нием сперму инкубировать в течение 4–5 ч в атмосфере водоро- да, то после ее оттаивания повышается подвижность и живу- честь спермиев и результативность осеменения. При использо- вании сахарозо-желточно-глицериновой среды применение ана- эробной обработки позволило поднять процент опоросившихся маток с 0 до 17.
Значительные успехи в разработке метода замораживания спермы хряка были достигнуты в 1973 г., когда в опыте В.П. Кононова и др. из 19 осемененных маток опоросилось 9 (48 %), давших 73 живых, нормально развитых поросят. В этом опыте использовали целый эякулят, который разбавляли 1:1 средой, содержащей сахарозу, ЭДТА-трис, цитрат натрия, сульфат ам- мония, глицерин, желток куриного яйца. Сперму подвергали анаэробной инкубации в атмосфере водорода. Замораживали ее на сухом льду гранулами с последующим погружением в жид- кий азот. Оригинальность метода состоит в том, что в процессе оттаивания спермы образующаяся жидкая фаза отделялась от твердой.
Поиски оптимальной технологии замораживания спермы хряка, основанные на подвижности спермиев после оттаивания,
были проведены Б.М. Вельможным и др., в которых выясни- лось, что гранулирование спермы благоприятнее для выживае- мости половых клеток, чем замораживание в ампулах. Однако при замораживании в сосудах число оживших половых клеток после оттаивания зависело от внутреннего диаметра, толщины и теплопроводности стен. Наилучшие результаты были получе- ны при замораживании больших объемов спермы в виде пла- стин на ровной поверхности охлажденного фторопласта, а так- же в пакетах из алюминиевой фольги, имеющих определенную форму.
Первые неудачи заставили многих исследователей обра- титься к теоретическим исследованиям, связанным с криобио- логией спермы хряка. Так, в опытах ряда исследователей было выяснено, что глицерин, используемый в среде в виде криопро- тектора, подавляет дыхание половых клеток хряка.
В.П. Кононовым и др. (1975) также было выяснено, что тех- нологическая обработка спермы – выдержка в аэробных усло- виях и само охлаждение – значительно тормозит дыхательную активность спермиев хряка. Однако наилучшая выживаемость была в том случае, когда половые клетки взятой спермы обла- дали наивысшей дыхательной активностью.
Опытами (I. Wilmut et al.) (1973) было выяснено, что наи- лучшая выживаемость половых клеток достигается при приме- нении двухмоментного разбавления спермы. Первый раз – сре- дой глицерина при температуре 30°С, второй раз – через 2,5 ч до 5°С средой, содержащей 4 % глицерина. Было также выясне- но, что по мере увеличения времени контакта спермиев с глице- рином подвижность их снижается. Поскольку при обработке спермы хряка большую помеху составляет большой ее объем, то многие исследователи искали различные способы ее загуще- ния. Повсеместно было применено центрифугирование спермы как наиболее радикальное средство. Однако опыты S. Salamon (1973) показали, что центрифугирование в параметрах, обеспе- чивающих осаждение спермиев (1000 об/мин за 10 мин), отри- цательно сказывается на их выживаемости. В этих же опытах выяснено, что удаление плазмы спермы существенно не ухуд- шает и не улучшает подвижность половых клеток после оттаи- вания. При сравнении различных разбавителей (трис- желточный, глюкозо-желточный, инозитол-желточный) и раз-
ных методов оттаивания (в сухих пробирках или с использова- нием оттаивающих сред) наилучший результат был при замо- раживании в трис-желточном разбавителе и при оттаивании в сухих пробирках. Важным элементом в процессе работы со спермой является режим ее замораживания и оттаивания. В этой связи были предприняты попытки найти оптимальные па- раметры замораживания и оттаивания для спермы хряка.
В опытах В.К. Милованова и др. (1974) было установлено, что лучшие результаты получаются при максимально быстром охлаждении спермы: при снижении температуры от 0 до минус 196°С за 3 мин. Однако в связи с тем, что сперму хряка всегда замораживают в большом объеме, то достичь более высокой скорости оказалось гораздо затруднительнее. Более поздними опытами В.П. Кононова, Э.Л. Хачапуридзе (1975) было под- тверждено, что наилучшие результаты получаются, если охлаж- дение производить быстро (в пределах 2–3 мин от 0°С до 196°С). При этом было выяснено, что решающее значение при глубоком охлаждении имеет явление переохлаждения спермы. При проявлении переохлаждения результаты зависели от его величины. Чем ниже опускалась температура при переохлажде- нии, тем хуже была подвижность спермиев после оттаивания. Поскольку при замораживании гранулами переохлаждение не проявляется, то этот способ замораживания пока является луч- шим. В этих опытах было выяснено, что режим оттаивания спермы имеет не меньшее значение, чем режим замораживания. Наилучшие результаты были получены при оттаивании спермы с максимально быстрым повышением температуры, но не пре- вышающей физиологического предела (40–42°С).
Помимо чисто морфологических и структурных изменений спермиев при замораживании, что было констатировано от- дельными исследователями, были попытки изучить их биохи- мические изменения. Так, в 1967 г. E.F. Graham, M.M. Pase об- наружили утечку ACT и ЛДГ из спермиев в процессе заморажи- вания.
В работе В.Г. Семакова и др. (1976) было установлено, что в процессе глубокого охлаждения спермы и даже при подготовке к замораживанию из спермиев происходит утечка ионов калия. Кроме того, В. Антонюком (1976) и Л.Г. Мороз и др. (1976) бы- ла обнаружена утечка гиалуронидазы.
Многочисленные исследования и поиски различных мето- дов замораживания спермы хряка все же привели к значитель- ным успехам в этом направлении. В 1974 г. в отдельных опытах В.К. Милованова и др. (1974) было получено до 50–70 % опо- росов, в среднем 8 поросят от матки.
Далее В.П. Кононов и др. (1975), сравнивая 10 различных вариантов сред для замораживания спермы хряков, выяснили, что, используя ЭДТА-трис, а также кальциевые и магниевые комплексонаты ЭДТА, можно получить 70–80 % опоросов.
В 1976 г. К. Левин применял разработанную им методику замораживания спермы. По его методике за 30–60 мин до взятия спермы хряку вводили 1 %-ный водный раствор атропина (0,007–0,01 мл на 100 кг массы тела). Полученную сперму вы- держивали до 2 ч при температуре 18–20°С, разбавляя в 2–4 раза ГХЦС-средой с добавлением 10 % желтка и 1,5–2 % глице- рина. Затем при температуре плюс 3–5°С выдерживали 8–10 ч. Замораживали гранулами объемом 0,5 мл на фторопластовой пластине с последующим хранением в жидком азоте. Оттаивали в ГХЦС-среде при температуре плюс 95–98°С. Из 10 животных, осемененных оттаянной спермой, 4 стали супоросными. При этом плодовитость колебалась от 4 до 7 поросят в гнезде.
В опытах Т.П. Ильинской (1976) применялась следующая технология сохранения спермы. После взятия сперму выдержи- вали при комнатной температуре в течение 1 ч. Затем 10 мин центрифугировали при 3000 об/мин, заменяя центрифугат сре- дой ГХЦС с добавлением 3–4 % желтка и 3 % глицерина с по- следующей выдержкой при температуре 18–20°С в течение 30 мин. Охлаждали до температуры плюс 5°С в течение 4,5 ч. По- том расфасовывали в полиэтиленовые емкости по 20–25 мл и замораживали в жидком азоте 3–5 мин. Для оттаивания спермы использовали ГХЦС-среду, предварительно нагретую до темпе- ратуры +95°С, и сохраняли в водяной бане при +55°С. Актив- ность оттаянной спермы в химическом стакане со средой коле- балась от 25 до 60 %. Процент опоросов и плодовитость были низкими (6,6 % и 3,2 поросенка).
Из большинства методик наиболее перспективной являлась методика замораживания спермы хряка, разработанная в отделе биологии воспроизведения и искусственного осеменения сель- скохозяйственных животных ВИЖ (В.К. Милованов и др.,
1974). Ее отличительной особенностью является процедура об- работки спермы, включающая аэробную выдержку ее после взятия в течение 1 ч и последующую анаэробную инкубацию в атмосфере водорода в течение 4–6 ч. Позднее ленинградские исследователи также подтвердили, что, применяя анаэробную выдержку, можно получить до 70–75 % опоросов от оттаянной спермы после ее замораживания.
Факторы кормления, повышающие устойчивость спер- миев. Воспроизводительная функция и продуктивность сель- скохозяйственных животных наряду с другими факторами во многом зависят от условий кормления и особенно от сбаланси- рованности рациона по всем необходимым питательным веще- ствам. Однако некоторые вещества, входящие в состав комби- кормов, чувствительны к окислению (жирорастворимые вита- мины, НЖК), которые в присутствии кислорода, света и других факторов разрушаются с образованием продуктов, снижающих питательность кормов и отрицательно влияющих на продуктив- ность и воспроизводительную способность животных.
В практике кормления животных известно использование антиоксидантов, стабилизирующих витаминную активность и повышающих питательность кормов. Особая роль при этом принадлежит витамину Е, который в организме стабилизирует лабильные вещества, входящие в состав жировой ткани и кле- точных мембран, а совместно с витамином А регулирует про- ницаемость клеточных оболочек. Так, в опытах П.С. Попехиной и др. (1975) установлено, что если хрячкам в 6-месячном воз- расте, имевшим различия по размеру тестикул, дополнительно к основному рациону вводят витамин Е в дозе 40 и 80 мг, то через 2 месяца эти различия в развитии семенников исчезали. При этом результативность осеменения маток спермой хряков, полу- чавших витамин Е, была выше, чем в контроле (9,5, 10,7 поро- сят в опыте и 8,6 в контроле). Установлено также, что дача 20 мг витамина Е на 1 кг корма на протяжении 6 месяцев способству- ет многоплодию маток.
Другие исследователи констатировали, что витамин Е (30,5 мг), введенный в комбикорм в сочетании с селеном (0,1 мг) на 1 кг корма, оказывает положительное влияние на воспро- изводительную функцию хряков и результативность осеменения маток. Положительный результат на воспроизводительную
функцию маток оказывают и другие синтетические антиокси- данты. В опытах А.А. Шубина и др. на свиноматках установле- но, что для стабилизации витамина А и повышения воспроиз- водительной функции эффективны витамин Н, дилудин и сан- тохин. Они способствуют увеличению концентрации витамина А в крови (от 128 до 139 мкг/%) у животных, получавших в подсосный период 160 мг витамина Е. Животные опытных групп, получавшие с рационом антиоксиданты, обеспечивали витаминный статус, повышали оплодотворяемость на 13–15 %, способствовали увеличению многоплодия маток и живой массы поросят.
Что касается аскорбиновой кислоты, то известно, что она положительно влияет на качество спермы хряков. Так, в опытах Л.С. Жильцовой установлено, что дача животным аскорбиновой кислоты (по 1 г в сутки) способствовала увеличению объема эя- кулята на 32 %, общего числа спермиев – на 30 %, резистентно- сти – на 66 % и переживаемости – на 62 %. Совместное исполь- зование витаминов А (14135 мг) и С (1230 мг) в рационе хряков также оказалось эффективным для их спермопродукции. Одна- ко скармливание антиоксидантов должно быть осторожным, так как избыточное содержание их как в кормах, так и в организме животных подавляет окислительно-восстановительный процесс и наносит вред продуктивности животных. Чрезмерное одно- кратное или длительное применение повышенных доз аскорби- новой кислоты вызывает нарушение ферментативной системы организма, гемолиз эритроцитов, замедление свертываемости крови, анемию.
Разработка метода замораживания спермы хряка доказала, что результативность осеменения маток такой спермой зависит от многих факторов и определяется не только криобиологиче- скими приемами обработки спермы, но и одновременным при- менением комплекса технологических, зоотехнических, генети- ческих и других условий. В частности, В.П. Кононовым и др. было выяснено, что кормление хряков-производителей имеет при этом решающее значение. В настоящее время хорошо отра- ботана суточная норма витамина Е на устойчивость половых клеток при глубоком охлаждении спермы. На протяжении 3 ме- сяцев хрякам крупной белой породы давали по 4 кг полнораци- онного комбикорма «экспериментальный-4», разработанный со-
трудниками лаборатории комбикормов и премиксов ВНИИФБиБ. Хряки экспериментальной группы дополнительно получали альфа-токоферол — 400 мг на хряка в сутки.
Анализ наличия витаминов в крови и в сперме показал, что, несмотря на пятикратное увеличение содержания витамина Е в рационе, концентрация его в крови достоверно не повысилась, на близкую к статистически достоверную величину повыси- лась; концентрация витамина А, хотя повышение содержания в рационе витамина А или соответствующего провитамина не было. По-видимому, общеизвестно представление о витамине Е, как факторе, способствующем сохранению и усвоению витами- на А. В этой связи некоторые исследователи вообще считают, что в функции воспроизведения витамин А играет не менее значительную роль, чем витамин Е.
Было установлено, что при увеличении витамина Е в ра- ционе хряков увеличивается и концентрация его в сперме на ве- личину, близкую к достоверной (Р=0,948), то есть путем специ- ального кормления можно увеличить содержание токоферолов в структурах половых клеток.
Действительно, у хряков, получавших избыток витамина Е в рационе, сперма обладает значительно более высокой живуче- стью (Р<0,999), чем у хряков, получавших обычную норму ви- тамина Е. Кроме того, у хряков, получавших в рационе избыток витамина Е, для искусственного осеменения свиноматок было использовано 47 % замороженных эякулятов (с подвижностью спермиев не менее 3 баллов), тогда как от хряка контрольной группы – только 21 %.
Результаты осеменения маток спермой, сохраненной в глу- бокоохлажденном состоянии (табл. 178) показывают, что на- блюдается тенденция к повышению процента опоросов от спермы хряков, которая получила избыточное количество вита- мина Е с рационом. Недостоверность разницы в этом опыте, по- видимому, обусловлена тем, что на результативность осемене- ния, кроме качества спермы, действует целый ряд факторов, та- ких как физиологическое состояние каждой отдельной свино- матки, точность выбора ее в состоянии охоты и др.
Таблица 178
Дата добавления: 2019-07-17; просмотров: 200; Мы поможем в написании вашей работы! |
Мы поможем в написании ваших работ!